目录做完活检又让做免疫组化 通知做免疫组化恶性可能多大 免疫组织化学染色诊断29项 免疫组织化学染色诊断液盖膜 内膜免疫组织化学染色诊断
MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即枝脊微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。
免疫组化和特殊染色是病轮搭庆理检查中常用的检测方法，免疫组化全称是免疫组织化学染色，病理检查中最常用的是HE染色，使用非腊握HE染色的检测方法都可以称为特殊染色。都是病理检查中对送检组织进行的处理方法，组织经过一系列的处理之后才能在显微镜下观察其有无病变，病变是什么等。
扩展资料：
免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体，单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。
参考资料来源：-免疫组化
免疫组化和特殊染色的意义分别阐链枣述如下：第一、免疫组化，主要是用于病理诊断预后判断和治疗效果的预测，能够提高棚历拆病理诊断水平，对临床有指导意义。例如恶性黑色素瘤HMB45为阳性表达，可以帮助明确诊断。除此之外，还有用于疾病的病理诊断和分型、探讨其发病机制，例如胃肠道间质瘤其C-kit基因突变可以用靶向药物治疗，效果较好。烂罩
第二、特殊染色是为了某种特殊的目的而进行的一种染色，例如结缔组织多色染色法、胶原纤维染色法、脂肪染色等，可以判断特定组织，用于诊断与鉴别诊断。
免疫组织化学染色诊断中的数量是5。免疫组织化学染色诊断是指抗体上结合荧光和可着色的化学锋圆物质在抗体上的结合，以及利用免疫学原理的特异性结合反应来检银族塌测细胞或组穗陪织中目标抗原的存在。
主要用于病理诊断，协助判断疾病类型和严重程度。
H.E的话主要观察大体碧轮病变，一般的组织学病变，而免疫组化可以检测某一种因子或者抗原抗肆慧者体的表达，进行定裂薯位定量
【中图分类号】R739．85 【文献标识码】A 【文章编号】1672－3783(2012)08－0296－01概述：当前，经过权威资料认证的免疫组化实验方法，已经对免疫组化的最基本问题做出了解答，并可以作为免疫组化技术中一种相对的标准。本文对免疫组化的操作步骤作出了一些具体的描述，提出了一些注意事项，并且对当前、今后的免疫组化自动化和标准化作出了评价和展望。
免疫组织化学在病理诊断中的作用已得到广泛的认同，具有特异性高、敏感性高、程序相对一致等特点，并已成为病理诊断中不可或缺的重要辅助技术。尽管免疫组化的理论比较简单，但方法与步骤却比较繁琐，在实际应用中还存在不少问题，直接或间接地影响了最终的病理诊断。要想达到可靠的实验结果，最重要的是将免疫组化技术的全部程序形成一种概念上的标准化。本文就免疫组化技术的标准化进行一些浅显地探讨。
1 标本的固定
为了使细胞和组织保持原有的形态结构，防止组织自溶和抗原性丢失，固定是关键。标本离体后要求在15分钟内用10%中性缓冲甲醛固定，在常温下时间为8-24小时，避免过度固定，固定时间过长，切片中容易产生甲醛色素颗粒，会影响结果观察以及抗原的破坏。固定组织的固定液为标本体积的5-10倍，脱钙液对抗原也有较强的破坏，所以浓度和脱钙时间不易太长。
2 防脱片的制备
目前通用的是Sigma多聚左旋赖氨酸（Poly-L-ly-sine）或硅化片，具有很理想的防脱片效果。
3 包埋与切片
用过高温度的石蜡包埋组织会破坏抗原，对于固定不太好的组织影响更大，包埋用的石蜡应选用低熔点的石蜡，切片的厚度在3-4微米，以利于观察，太厚的切片会影响染色结果和诊断。
4 烤片
切片在50-60℃的恒温箱里烤片2小时，至少1小时才不至于脱片，烤片时间过短易脱片，时间过长或温度过高会破坏抗原。
此斗5 脱蜡
免疫组化的脱蜡应与常规HE脱蜡分离，以保证脱蜡彻底，脱蜡不彻底会影响组化染色结果，切片脱蜡后进入梯度乙醇脱水至水化。
6 抗原修复
6.1 抗原修复是组化的关键技术
免疫组化染色中最关键的步骤可以说是抗原修复了，组化染色结果的表达与抗原修复直接相关。因组织被甲醛固定后蛋白质发生交联，抗原决定簇封闭，只有恢复抗原的免疫原性才能完成免疫化学反应。抗原修复方法有多种，主要是酶消化法与加热修复两种方法，现在由于加热抗原修复方法的广泛应用，酶消化法在免疫组化中的应用已很少。免疫组化的加热抗原修复方法包含微波法、水煮法、高压法，现在比较公认的修复效果是高压法大于水煮法，水煮法大于微波法。
6.2 抗原修复液的选择
抗原修复液有多种，有柠檬酸盐缓冲液（PH6.0）、EDTA（PH8.0）、Tris（PH7-8）等，目前柠檬酸盐缓冲液（PH6.0）可作为首选的常规使用的抗原修复液，它适合于大多数种类抗体，染色背景清晰。一般抗原难以表达的可以选择EDTA和Tris缓冲液，这两种修复液对一部分抗原修复效果较强，但染色背景较深。
6.3 抗原修复实例
在全国，有多家实验室对ER、PR进行了反复实验，得出的结论是强力推荐使用高压抗原修复方法。
我们单位在最近的免疫组化测评赛中，对参赛的5个待测抗原进行抗原修复，取得了比较满意的结果。根据我们得出的经验，检测CD10、CD30这两项抗原，我们推荐使用高温水煮修复，修复液为tris-EDTA(PH9.0)，检测ER、PR、CK这三项抗原，推荐使用压力锅，修复液为柠檬酸盐缓冲液（PH6.0），各单位可根据实验室的具体条件和经验选用微波、水煮、高压修复以及抗原修复液。
6.4 高压抗原修复方法
组织切片经二甲苯脱蜡至水，浸泡于蒸馏水中待用，取一定量抗原修复液于压力锅中，修复液必须浸没整张切片，加热沸腾，将脱蜡水化后的切片置于耐高温染色架银唤上，放入已沸腾的修复液中，盖上锅盖，扣森搏磨上压力阀，继续加热至喷气（整个时间约需4-5分钟），开始计时1-2分钟后，压力锅离开热源，室温冷却15分钟，取下气阀，打开锅盖，切片冷却至室温后，蒸馏水洗，PBS洗2min×3次。
7 生物素封闭
一般进行抗原修复处理的切片都需要进行内源性生物素封闭处理；
7.1 3%H2O2浸泡切片10min
在免疫组化染色中如果采用过氧化物酶检测，必须进行封闭处理，这样可以消除组织中的红细胞、粒细胞对染色结果的干扰。虽然3%的H2O2对抗原有轻微的损害，但封闭效果非常显著。
7.2 血清封闭
一般在加载一抗之前使用封闭血清（室温15-20分钟），可以减少非特异性显色。血清的种属一般与二抗的种属相同，一抗中若含正常血清则可以免去此步骤。
实验中通常用的冲洗缓冲液为PBS和TBS，加入Tween20可以加强冲洗效果，在组化染色中严格的冲洗可防止背景着色。
8 一抗孵育
加载一抗50-100ul，室温静置1小时或者4℃过夜或者37℃1小时，如4℃过夜后需在37℃复温45分钟，PBS洗3次各2分钟。
9． 加一滴（50ul-100ul）检测试剂（二抗），室温或37℃放置30分钟， PBS洗三次，每次2分钟。
10. DAB显色5-10分钟
11. 苏木素复染、脱水、透明、封片。
衬染的步骤十分简单，但衬染的好坏对染色质量的影响很大，不易太深或太浅。首选的是Harris苏木素衬染，它在水中洗涤后可以呈鲜亮的兰色，与DAB染色对照效果很好，使用简单方便。
对于即用型抗体，厂商已进行多种实验条件的检测，可以直接使用，而浓缩性抗体，可按照供应厂商提供的稀释度进行预实验，一般在厂家提供的滴度前后各加一个滴度做预实验，抗体的最佳稀释度为在无背景染色的情况下获得最强阳性信号。
通用的检测是生物素标记的辣根过氧化物酶为基础的检测方法，有SP、LSAB、ABC等方法，都是目前实验室广泛采用的检测方法，其方法简便易行且试剂稳定。SP三步法和Envision二步法高效经济，为国内免疫组化首选的检测。
显色通常采用的是辣根过氧化物酶，因此选择DAB（棕色）和AEC（红色）酶底物，常规组化显色首选的是DAB，它定位清晰，易于保存。
在免疫组化的质量控制中，最重要的是设立阳性和阴性对照，每批实验中最好有一张阳性对照和阴性对照，这样才能确保实验的可靠性，虽然很多医院病理科的工作量很大，但是不要怕麻烦，可以每月进行一次室间质控，以保证免疫组化染色结果的可靠性和准确性。
自动染色仪，它是一种各种试剂高度通用的仪器，可使用大多数免疫组化染色的抗体、检测和其他试剂，是当今最流行的开放式的自动染色仪。它利用电脑控制代替技术人员手工操作，大大地减少了手工操作出现的误差。自动染色仪能精确泵出每次滴加试剂的量，以及将每一步的染色时间精确到秒，空气压缩泵能均匀地吹掉切片上多余的液体，这一切彻底避免了免疫组化染色过程中人工操作的误差，染色仪将所有的染色步骤存储在电脑里，这些优点保证了染色结果的一致性，不同单位的实验室选择相同的试剂及染色过程就可以达到相同的染色结果。
近年来，随着免疫组化标准化的逐步实行，免疫组化自动染色仪将逐步进入病理科，技术人员将从烦琐的人工操作中解脱出来，会极大提高免疫组化的工作效率，同时也将免疫组化标准化推上了一个新的台阶。
为了尽快实行免疫组化标准化，还需具备以下条件：① 有丰富经验的病理医生② 有丰富经验的技术人员 ③ 可靠的标准化操作方法④ 合格稳定的免疫组化试剂⑤ 科学地设立对照实验⑥ 阳性和阴性的正确判定⑦ 诊断中抗体的联合应用⑧ 自动化的免疫组化染色。
同时，病理技师必须树立高度的责任心，技师的工作质量是免疫组化染色结果成功的关键，而免疫组化的标准化是质量控制的关键。虽然免疫组化的工作和质控工作比较烦琐，且工作量大，但对于一个病理科实验室来说，有序有效地实行这两项工作是至关重要的，它不仅提高了病理诊断的可靠性，也将进一步促进免疫组化工作持续健康的发展。
